一、实验原理
减数分裂是一种特殊方式的细胞分裂，仅在配子形成过程中发生。这一过程的特点是：连续进行两次核分裂，而染色体只复制一次，结果形成四个核，每个核只含单倍数的染色体，即染色体数减少一半，所以称作减数分裂。另外一个特点是前期特别长，而且变化复杂，包括同源染色体的配对、交换与分离等。
二、实验目的
1.了解动、植物的生殖细胞的形成过程。
2.掌握制片方法。
三、实验材料
蚕豆（Viciafaba）花蕾
短角斑腿蝗（Catantopsbrachycerus）精巢
四、实验器具和药品
1.用具：镊子，解剖针，载玻片，盖玻片，大培养皿，立式染缸，酒精灯，量筒，吸水纸，显微镜。
2.药品：无水乙醇，冰醋酸，洋红（carmine），甘油，松香石蜡。
Carnoy固定液：无水乙醇3份，冰醋酸1份。
醋酸洋红：45％醋酸100毫升，加洋红1克，煮沸（沸腾时间不超过30秒），冷却后过滤即成。也可以再加1—2％铁明矾水溶液5—10滴，色更暗红。
封蜡：用等量的松香（balsam）和52℃石蜡加热混合而成，所以又称松香石蜡。
五、实验说明
在植物花粉形成过程中，花药内的一些细胞分化成小孢子母细胞（2n），每个小孢子母细胞进行二次连续的细胞分裂（第一次减数分裂和第二次减数分裂）。每一小孢子母细胞产生四个子细胞，每个子细胞就是一个小孢子。小孢子内的染色体数目是体细胞的一半（图1-1）。
在动物的有性生殖过程中，也有一个由双倍体到单倍体的减数过程。动物的精巢分化出精母细胞，精母细胞减数分裂，形成单倍染色体的精子（图1-1）。
图1-1 动植物雄性性细胞各时期的对照
在适当的时机采集植物的花蕾或动物的精巢，经固定、染色压片后，就可以在显微镜下观察到细胞的减数分裂。整个减数分裂可分为下列各个时期。下面图1-2至图1-9是以雄性雏蝗（Chorthippusbrunmeus）的减数分裂各个时期的照片。
第一次减数分裂
前期Ⅰ细线期：第一次分裂开始，染色质浓缩为几条细而长的细线。每一染色体已复制为二个单体，但在显微镜下还看不出染色体的双重性。
偶线期：染色体形态与细线期没有多大变化，同源染色体开始配对。
粗线期：同源染色体配对完毕，这种配对的染色体叫双价体，每个双价体含有四个染色单体，但仅有两个着丝粒。染色体继续短粗。
双线期：配对的同源染色体开始分开。
由于染色单体间起过交换，同源染色体有交叉现象。染色体螺旋化程度加深。
浓缩期：又叫终变期，交叉向染色体端部移动，交叉数减少，染色体变得更短粗。浓缩期末核膜消失。
中期Ⅰ各个双价体排列在赤道上，纺锤体形成，两个同源
染色体上的着丝粒逐渐远离。双价体开始分离。染色体数仍为2n，但每一染色体含有两个染色单体。
后期Ⅰ两条同源染色体分开，分别移向两极。每一染色体有一着丝粒，带着两个染色单体。每一极得到n条染色体。染色体数已减半。
末期Ⅰ染色体解旋，又呈丝状，核膜形成，胞质分裂，成为二个子细胞。
间期在第二次分裂开始以前，两个子细胞进入间期。但有的
植物如延龄草（Trillium）和大多数动物不经过末期和间期，直接进入第二次减数分裂的晚前期。
第二次减数分裂
前期Ⅱ染色体缩短变粗，染色体开始清晰起来。每个染色体含有一个着丝粒和纵向排列的两条染色单体。前期快结束，染色体更短粗，核膜消失。
中期Ⅱ染色体排列在赤道面上，每个染色体含一个着丝粒、两条染色单体。两条染色单体开始分离。此时细胞的染色体数为n，每一染色体有两条染色单体。
后期Ⅱ两条染色单体分离，移向两极，每极含n条染色体。
末期Ⅱ染色体逐渐解螺旋，变为细丝状，核膜重建，核仁重新形成。胞质分裂，各成为两个子细胞。
减数分裂结束，一个细胞经减数分裂形成四个子细胞，每个子细胞中只有n个染色体。因为细胞分裂两次，染色体只复制一次。
六、实验步骤
（一）蚕豆花的观察
1.采集刚现蕾的花序置于固定液内固定三小时后，换入70％的乙醇中。若需保存较久，可放在70％乙醇一份、甘油一份的溶液中。
2.取已固定好的花序，按其花蕾大小，排列在小培养皿中。
3.剥开花蕾（先取中等大小的花蕾）取出花药，放在载玻片上。
4.加一滴醋酸洋红在花药上。
5.加上盖玻片，上面再放吸水纸，用拇指适当加压，把周围的染色液吸干。
6.用封蜡封片，作成临时标本。
7.显微镜下观察。
（二）蝗虫精巢的观察
1.随蝗虫物种的不同，采集时间有变化。上海地区一般在四月至十月都可采到蝗虫。
2.采集方法可用手捉或用扫网捕捉。如短角斑腿蝗喜温暖，可在十月左右，在晴天阳光下的草地上用扫网捕捉。
3.用镊子夹住雄虫尾部，向外拉。可见到一团黄色组织块，这就是蝗虫的精巢。剔除精巢上的其它组织，将其放到Carnoy固定液中固定1.5—2小时，再放入70％酒精溶液中。
4.将醋酸洋红滴在染色板内，取固定好的精巢放入染液中染色十五分钟以上。
5.用解剖针从精巢上挑取几条丝状物（精细管）放在载玻片上，加一滴染液，压片。
6.用封蜡封片，作成临时标本。
7.显微镜下观察。
（三）制做永久片
上述压片所得到的片子，只能做临时观察，要长期保存时，可做永久片。步骤如下：
1.用玻棒沾一点甘油蛋白（甘油1份 新鲜鸡蛋白1份）在载玻片上，用手指涂匀。将载玻片在酒精灯上烘一下（1—3秒）。
2.挑取一条已染色的精细管，加一滴染液在载玻片上，加盖玻片，压片。
3.压片后在酒精灯上烘一下，很快掠过，约5—6次。
4.用封蜡封片。
5.在显微镜下观察。
6.如有分裂相多、染色良好的片子也可制作永久标本，方法如下：
皿内置一短玻棒，倒入约2/3的固定液。将选好的片子剔除封蜡，翻过来（有材料的面向下），一端搭在玻棒上，在固定液中浸泡。待盖玻片自然脱落后，与载玻片一起轻轻移入以下各缸：
加Eupral一滴，封片。贴上标签。
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