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  • 聚丙烯酰胺凝胶电泳法(PAGE)分离血清蛋白质(核黄素-TEMED聚合系统)

  • 点击:    作者:   来源: 日期:2007-04-09    本站论坛


②分离胶应有的pH值
在分离胶中要求甘氨酸有效迁移率(mGαG)超过所有的蛋白质的有效迁移率。这样甘氨酸的泳动速度即超过所有蛋白质,使分离胶保持均一的pH及电位梯度,以便蛋白质样品在其中进行普通的电泳分离和分子筛分离(如图15-5C所示)。
血清中的前清蛋白在7.5%凝胶中的迁移率小于―0.5单位,则mGαG至少应为―5.0。即α= 1/3,按上述计算pH应为9.5。实际上Davis所用的配方中,分离胶的pH值为8.9。但在电泳分离时,根据实际测定证明与理论计算相符,实际上比原制备时的pH约高出半个pH单位,所以与要求的数值是符合的。
2.分子筛效应
分子量或分子大小和形状不同的蛋白质通过一定孔径的分离胶时,受阻滞的程度不同,因此表现出不同的迁移率,即所谓分子筛效应。即使净电荷相似,也就是说自由迁移率相等的蛋白质分子,也会由于分子筛效应在分离胶中被分开。
此处分子筛效应是指样品通过一定孔径的凝胶时,小分子走在前面,大分子走在后面。而在柱层析方法中的分子筛作用,则是大分子通过凝胶颗粒之间的缝隙先流出,而小分子则通过凝胶颗粒内的孔道后流出。
3.电荷效应
蛋白质混合物在凝胶界面处被高度浓缩,堆积成层,形成一狭小的高浓度的蛋白质区,但由于每种蛋白质分子所载有效电荷不同,因而迁移率不同。承载有效电荷多的,泳动的快,反之则慢。因此各种蛋白质就以一定的顺序排列成一个一个的圆盘状。在进入分离胶中时,此种电荷效应仍起作用。



(二)聚丙烯酰胺凝胶的性能及制备原理
1.性能
聚丙烯酰胺凝胶的机械强度好,有弹性,透明,相对地化学稳定,对pH和温度变化较稳定,在很多溶剂中不溶,是非离子型的,没有吸附和电渗作用。原料成分要采用高纯度制品,通过改变浓度和交联度,可以控制孔径变动在极广泛的范围,并且制备凝胶的重复性好,由于纯度高及不溶性,因此还适于少量样品的制备,不致污染样品。
2.制备原理
聚丙烯酰胺是用丙烯酰胺(acrylamide,简称Acr)和交联剂甲叉双丙烯酰胺(N,N,N',N'-methylene bisacrylamide,简称Bis)在催化剂的作用下聚合而成。它们的结构式见下页。
聚丙烯酰胺凝胶聚合的催化体系有两种:
(1)化学聚合:化学聚合的催化剂通常多采用过硫酸铵(ammonium persulfate,简称AP)或过硫酸钾,此外还需要一种脂肪族叔胺作为加速剂,最有效的加速剂为N,N,N',N'-四甲基乙二胺(N,N,N',N'-tetramethyl ethylenediamine,简称TEMED),其次为三乙醇胺及二甲氨基丙腈(3-dimethylaminopropionitrile,简称DMPN)。在叔胺的催化下,由过硫酸铵形成氧的自由基,后者又使单体形成自由基,从而引发聚合作用。叔胺要处于自由碱基状态下才有效。所以在低pH时,常会延迟聚合作用。分子氧阻止链的延长,妨碍聚合作用,一些金属离子也能抑制聚合。冷却可以使聚合速度变慢。通常控制这些因素使聚合在1小时内完成,以便使凝胶的性质稳定。
(2)光聚合:光聚合通常用核黄素为催化剂。不一定加TEMED即能聚合,但加入则可加速聚合。
光聚合通常需要有痕量氧存在,核黄素经光解形成无色基。后者被氧再氧化形成自由基,从而引发聚合作用。但过量的氧会阻止链长的增加,应该避免过量的氧存在。
光聚合通常用日光灯或普通钨丝灯泡作光源,直接日光或室内强散射光也可以。
用核黄素进行光聚合的优点是:①核黄素的用量很低(1毫克/100毫升);②通过光照可以预定聚合时间,但光聚合的凝胶孔径较大,而且随时间延长而逐渐变小,不太稳定,所以用它制备大孔凝胶较适合。化学聚合的凝胶孔径较大,因而采用过硫酸铵-TEMED催化系统制备小孔凝胶(分离胶),而且制备的重复性好。
3.凝胶浓度和交联度与孔径大小的关系
凝胶浓度与被分离物的分子量大小的关系,大致范围如表15-1。


聚丙烯酸胺:



常用的所谓标准凝胶是指浓度为7.5%的凝胶,大多数生物体内的蛋白质在此凝胶中电泳能得到满意的结果。当分析一个未知样品时,常常先用7.5%的标准凝胶或用4—10%的凝胶梯度来试测,而后选出适宜的凝胶浓度。
凝胶的机械性能、弹性是否适中是很重要的,胶太软易于断裂,尤其在制作板型电泳的薄片状凝胶时,太软很难操作。太硬则脆,也易折断。凝胶的透明度、粘着度是否合适也影响分离效果。凝胶的机械性能、弹性、透明度和粘着度取决于凝胶总浓度和Acr与Bis两者之比例。
凝胶密度或凝胶浓度,可以用二个字母T和C来定义。T代表丙烯酰胺和亚甲基双丙烯酰胺二个单体的总百分浓度。C代表总浓度T中交联剂Bis的百分浓度。Hjertern,S.推导出如下这个式子,用以计算凝胶的用量。
这里 为丙烯酰胺的量(g)
b为亚甲基双丙烯酰胺的量(g)
m为缓冲液体积(ml)
/b的值是有临界线的,如果 /b<10,制成的凝胶脆而易碎,坚硬而不透明。如果 /b>100,即使5%的丙烯酰胺也是糊状的,容易破碎。 /b的值接近30时,(其中丙烯酰胺的量必须>3%),可以制成既有弹性又完全透明的凝胶。
Davis,B.J.在1964年,研究了丙烯酰胺和亚甲基双丙烯酰胺的浓度范围,分别为1.5—60%和0—0.626%之间的凝胶形成情况。他发现丙烯酰胺浓度<2%,亚甲基双丙烯酰胺浓度<0.5%,不发生聚合凝固作用。为了获得一种有弹性的凝胶,在增加丙烯酰胺浓度的同时,应适当减低亚甲基双丙烯酰胺的浓度。对于这个要求,Richards,E.C.等人提出了如下一个经验公式:
C=6.5―0.3T
浓度在5—20%范围内,可以应用这个式子容易地计算凝胶的组成用量。式中C可有1%的变化。
对于人血清蛋白质的分离,Brackenridge,C.J.等人,推导出了下面这个经验式,用以计算最适的凝胶浓度,以便获得最好的分辨率。
B=0.201―0.0112T
这里,B代表亚甲基双丙烯酰胺的百分浓度,T为二个单体总的百分浓度。
用于研究大分子核酸的凝胶多为大孔径凝胶,太软,不易操作,最好加入0.5%琼脂糖。有的在3%凝胶中加20%蔗糖,也可增加机械强度而又不影响孔径大小。
(三)几种染料的性能及染色原理
1.氨基黑10B(amino black 10B)
C22H13O12N6S3Na3 MW=715,λmax=620―630nm。氨基黑是酸性染料,其磺酸基与蛋白质反应构成复合盐。是最常用的蛋白质染料。但用氨基黑染SDS-蛋白质时效果不好。另外,氨基黑染不同蛋白质时的着色度不等,色调不一(有蓝、黑、棕等),作同一凝胶柱的扫描时误差较大,需要对各种蛋白质作出本身的蛋白质-染料量(吸收值)的标准曲线。

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