• RGDS (PAC-1阻断剂)：用PBS配制，10mg/ml。
• 血小板激活剂：ADP，浓度2′10-4M，2-8℃保存。也可选用其他激活剂，如PMA、纤维蛋白、TRAP。
• PBS缓冲液：含0.1%NaN3，过滤后2-8℃保存。
• 固定液：含1%多聚甲醛的PBS缓冲液，2-8℃可保存一周。
• 振荡混匀器。
• FACS流式细胞仪：进行数据获取。
• CaliBRITE Beads/FACSComp软件：FACS仪器校正，预设获取条件。
• CellQuest软件：试验数据获取和分析软件。

操作步骤

1.        标本采集：
(1)采血管顺序编号。
(2)抽取静脉血，采血管中注入2ml。
(3)于10分钟之内完成血小板激活和染色步骤，操作时应注意减少人工激活。

2.        血小板激活：
(1)试管内加入50mlADP，450ml全血，轻轻摇匀。
(2)室温孵育5分钟。
(3)立即染色。

3.        荧光抗体染色：
(1)Falcon管编号。
(2)在对照管中加入PE同型对照、CD61 PerCP、PAC-1各20ml，RGDS加10ml。
(3)在试验管中加入三种抗体各20ml。
(4)在对照管和试验管中各加入未激活或激活的血标本5ml。
(5)轻轻混匀，室温暗处孵育15-20分钟。
(6)各管中加入1ml冷的固定液 (2-8℃)，充分混匀， 2-8℃阴暗处放置30分钟。
(7)24小时内上机分析。

4.        上机获取数据：

(1)开机：

• 检查鞘液筒装满，废液筒倒空。
• 先打开流式细胞仪，再打开计算机。
• 仪器气路加压，排空气泡。
• 做FACSComp。

(2)打开CellQuest，顺序放置对照管和试验管，获取数据：

• 调出 获取条件，FSC和SSC选择Log方式。
• 获取条件为CD61 PerCP阳性。
• 使用对照管调整FL1和FL2的PMT，使阴性群体位于FL1 vs FL2点图左下角。
• 分别使用PAC-1 FITC / IgG1 PE / CD61 PerCP和PAC-1 FITC+ RGDS / CD 62P PE / CD61 PerCP调整FL2-FL1和FL1-FL2补偿。
• 获取各管的试验数据。

5.结果分析：

在CD61 vs SSC点图中设门找血小板群。 CD61 vs SSC 点图显示有三群，CD61阳性/低SSC一群主要由单个血小板组成，CD61阳性/高SSC一群主要由黏附血小板的血细胞组成， CD61阳性/散射光更低的一群主要由血小板来源的碎片组成。由于在生理和病理情况下，血小板群和红细胞群的大小、颗粒度会有交叉，因此，不建议使用FSC-SSC图设门。

在CD61 vs SSC点图中找出CD61 PerCP阳性的血小板群 (单个血小板和黏附在WBC上的血小板)，设门。门内做PAC-1 FITC vs CD62P PE点图的双参数分析，统计结果。

注意事项

1.        采血时请用大号针管，抽出的前2ml血应弃去不用。

2.        尽量避免标本受到物理振动。

3.        取血后10分钟内完成染色操作。

4.        在Falcon管中加血标本5ml，管壁上不能有残留血，未染色的部分会影响试验结果。

5.为了检测和控制血小板体外激活，建议使用正常未受激活的血标本平行做质量控制。

附：BDIS血小板活化试剂

BD抗体：

辅助试剂：