PCR技术
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PCR技术

点击:   作者:   来源:  时间: 2007-05-08  本站论坛

1 导论
多聚酶链式反应(Polymerase Chain Reaction, PCR)是美国Perkin-Elmer/Cetus公司人类遗传研究室Mullis K. B.等人于1985年发明的一种快速体外DNA片段扩增技术,是八十年代分子生物学资源领域的一项革命性突破,被誉为分子生物学资源发展史上的又一里程碑。该技术一问世,就在分子生物学、医学、生物工程、法医学、考古学等领域得到快速而广泛的应用,并且对已建立的基因克隆、DNA序列分析等现代分子生物学技术的发展也起了巨大的推动作用。
PCR技术是一种模拟自然DNA复制过程的体外酶促合成特异性核酸片段技术(亦称无细胞分子克隆技术)。它以待扩增的两条DNA链为模板,由一对人工合成的寡核苷酸作为介导,通过DNA聚合酶促反应,在体外进行特异DNA序列扩增。其过程包括模板变性(denature)、引物退火(annealing)和用DNA聚合酶延伸(clongation)退火引物在内的重复循环系列,使末端被引物5’端限定的特异性片段成指数形式累积。由于在每一循环中合成的引物延伸产物可作为下一循环中的模板,因而每次循环中靶DNA的拷贝数几乎呈几何级数增长。因此20次PCR循环将产生约一百万倍(220)的扩增产物,具有操作简单、快速、灵敏度高、特异性强的特点,并且具有从DNA粗制品和降解的DNA模板中扩增靶序列的能力,这一点在生药鉴定应用中尤为重要。
PCR的原理类似于DNA的天然复制过程,关键是运用两个起始引物,分别为待扩增序列的相对的两条单链DNA结合,结合位点分别位于待扩增序列的两端,并且3’端相对,然后利用DNA聚合酶依赖于DNA模板的特性,模仿体内的复制,在两个引物之间诱发聚合酶反应。PCR反应可以简述如下:
在微量离心管中加入适量缓冲液,加微量模板DNA,四种脱氧单核苷酸(dNTP),耐热Taq聚合酶及两个合成DNA引物,并有Mg2 存在。
1、加热使模板DNA在高温下(95℃左右)变性,双链DNA解开而变成单链DNA游离于溶液中。这是所谓变性阶段。
2、PCR的引物是两段人工合成的寡核苷酸链,长度为16-24个核苷酸残基,其顺序由被扩增的DNA片段两端的序列决定。这两段寡核苷酸链分别与模板DNA的正链和负链互补,所互补的位点一个在被扩增序列的“上游”,一个在被扩增序列的“下游”。高温使模板DNA变性成单链以后,温度降低,由于PCR反应体系中引物的拷贝数远远多于模板DNA的拷贝数,因而引物与模板DNA形成复合物的机率要大大高于模板DNA两条单链的重新结合。只要严格地控制复性的条件,复性过程是倾向于形成引物与模板的复合物的。这是退火阶段。
3、溶液反应温度升至中温(72℃),在Taq酶作用下,以dNTP为原料,引物为复制起点,模板DNA的一条双链在解链和退火之后延伸为两条双链。这是延伸阶段。
如此重复,改变反应温度,即高温变性,低温退火,中温延伸三个阶段。这三次改变温度为一个循环。每循环一次,使特异区段基因拷贝数扩大一倍,一般30次循环,基因放大数可达2n倍。可用公式
Y=(1+X)n
表示,式中Y=DNA扩增倍数,X=扩增效率,循环数为n。
如X=100%,n=20时,Y=1048576倍。但实际扩增效率(X)不会达到100%。

2 试验条件
本程序适用于自动PCR操作,可适用于大多数情况,所用酶是不含核酸外切酶活性的热稳定聚合酶,如Taq聚合酶等。

【药品试剂】
引物(各50pmol)
0.2mmol/L dNTPs(必须使用高质量的dNTPs,这一点非常重要。dNTPs经反复化冻后会发生降解,因此应分成小份保存。应注意混合物中四种dNTP的量要相等)
模板DNA:约0.05~1mg基因组DNA或0.002~0.02mg质粒DNA
Taq DNA聚合酶(Perkin Elmer, Norwalk, Connecticut)
10×PCR缓冲液(500mmol/L KCl,15mmol/L MgCl2,100mmol/L Tris·HCl,pH 8.3)
矿物油
电泳所需试剂

 


 

 


【仪器设备】

PCR扩增仪
电泳装置
微量离心机
微量移液器(1~20ml和20~200ml)
0.5ml Eppendorf管
紫外线观察装置及照相设备

2.2.2.3 操作程序

1.在无菌的Eppendorf管内加入以下反应物:


2.93℃反应2 min后开始以下循环:
93℃变性反应1 min;
50℃退火反应1 min;
72℃延伸反应3 min。
经过17~35循环后,最后一个循环72℃增加5 min。循环结束后反应产物置于40℃保存。
3.取1~5ml反应产物走凝胶电泳,经溴化乙锭染色检测扩增的情况。

2.2.2.4 应注意的问题及其解决方法
1.PCR反应条件的优化
要优化特定的PCR反应,有必要试用不同的反应组分和循环参数。表2-1列出了添加或改变某一试剂浓度对反应结果的影响,从中大家可以得到一些线索以改进反应条件,提高PCR产量和/或特异性,一般情况下,只须改变一两个参数就行了,如pH值和MgCl2浓度。表2-2给出了循环参数对PCR结果的影响。
表2-1 PCR各反应组分浓度对产物特异性和产量的影响

反应组分

提高产量

提高特异性

模板浓度

增加

减少

引物浓度

高至75 pmol

低至15 pmol

引物长度

增加

dNTPs

1 mmol/L

20 mmol/L

Tris-HCl (10 mmol/L pH8)

pH高至10*

pH高至10*

MgCl2

高至4 mmol/L

1.5 mmol/L

DMSO

10%**

甘油

2%

甲酰胺

5%

Taq DNA聚合酶***

高至5U

0.5U


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