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质粒DNA的提取、酶切与鉴定
来源:网络 作者:佚名 发布时间:2008-09-06  
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一、 目的
掌握质粒的小量快速提取法;了解质粒酶切鉴定原理。
二、 原理
质粒(plasmid)是一种染色体外的稳定遗传因子。大小在1~200kb 之间,具有双链闭合环状结构的DNA 分子。主要发现于细菌、放线菌和真菌细胞中。质粒具有自主复制和转录能力,能使子代细胞保持它们恒定的拷贝数,可表达它携带的遗传信息。他可独立游离在细胞质内,也可整合到细菌染色体中,它离开宿主的细胞就不能存活,而它控制的许多生物学功能却赋予宿主细胞的某些表型。
所有分离质粒DNA 的方法都包括3 个基本步骤:培养细菌使质粒扩增;收集和裂解细菌;分离和纯化质粒DNA。采用溶菌酶可破坏菌体细胞壁,十二烷基磺酸钠(Sodium dodecyl sulfate, SDS)可使细胞壁裂解,经溶菌酶和阴离子去污剂(SDS)处理后,细菌DNA 缠绕附着在细胞壁碎片上,离心时易被沉淀出来,而质粒DNA 则留在上清液中。用酒精沉淀洗涤,可得到质粒DNA。质粒DNA 分子量一般在106~107 道尔顿范围内。在细胞内,共价闭环DNA(covalentlyclosed circular DNA,简称cccDNA)常以超螺旋形式存在。若两条链中有一条链发生一处或多处断裂,分子就能旋转而消除链的张力,这种松弛型的分子叫作开环DNA(open
circular DNA, 简称ocDNA)。在电泳时,同一质粒如以cccDNA 形式存在,它比其开环和线状DNA 的泳动速度都快,因此在本实验中,质粒DNA 在电泳凝胶中呈现3 条区带。限制性内切酶是一种工具酶,这类酶的特点是具有能够识别双链DNA 分子上的特异核苷酸顺序的能力,能在这个特异性核苷酸序列内,切断DNA 的双链,形成一定长度和顺序DNA 片段。如:EcoRⅠ和HindⅢ的识别序列和切口是:
EcoRⅠ:G↓AATTC
HindⅢ:A↓AGCTT
G,A 等核苷酸表示酶的识别序列,箭头表示酶切口。限制性内切酶对环状质粒DNA有多少切口,就能产生多少酶切片段,因此鉴定酶切后的片段在电泳凝胶的区带数,就可以推断酶切口的数目,从片段的迁移率可以大致判断酶切片段大小的差别。用已知分子量的线状DNA 为对照,通过电泳迁移率的比较,就可以粗略推测分子形状相同的未知DNA的分子量。
三、 实验材料、主要仪器和试剂
1.主要仪器
(1)塑料离心管1.5mL×30
(2)塑料离心管架×1
(3)微量加样器10μL、100μL、1 000μL 各一支
(4)常用玻璃仪器及滴管等
(5)台式高速离心机(20 000r/min)
(6)电泳仪
(7)电泳槽
(8)样品槽模板
2.材料
大肠杆菌DH5α
3.试剂
(1)pH8.0 G.E.T 缓冲液(50mmol/L 葡萄糖,10 mmol/L EDTA,25mmol/L Tris-HCl);用前加溶菌酶4mg/mL。
(2)pH 4.8 乙酸钾溶液(60mL 5mol/L KAc,11.5mL 冰乙酸,28.5mL H2O)
(3)酚/氯仿(1∶1,V/V):酚需在160℃重蒸,加入抗氧化剂8-羟基喹啉,使其浓
度为0.1%,并用Tris-HCl 缓冲液平衡两次。氯仿中加入异戊醇,氯仿/异戊醇(24∶1,V/V)。
(4)pH 8.0 TE 缓冲液:10mmol/L Tris,1mmol/L EDTA,其中含有RNA 酶(RNase)20μg/mL。
(5)TBE 缓冲液:称取Tris10.88g、硼酸5.52g 和EDTA 0.72g,用蒸馏水溶解后,定容至200mL,用前稀释10 倍。
(6)EB 染色液:称取5g 溴化乙锭(Ethidium Bromide,EB),溶于蒸馏水中并定容到10mL,避光保存。临用前,用电泳缓冲液稀释1 000 倍,使其最终浓度达到0.5μg/mL。
四、操作步骤
1.培养细菌
将带有质粒的大肠杆菌DH5α接种在LB 琼脂培养基上,37℃培养24~48h。
2.从细菌中快速提取制备质粒DNA
(1)用3~5 根牙签挑取平板培养基上的菌落,放入1.5mL 小离心管中,或取液体培养菌液1.5 mL 置小离心管中,10 000r/min 离心1min 去掉上清液。加入150μL 的G.E.T.缓冲液,充分混匀,在室温下放置10min。
(2)加入200μL 新配置的0.2mol/L NaOH,1%SDS。加盖,颠倒2 ~ 3 次使之混匀。冰上放置5 min。
(3)加150μL 冷却的乙酸钾溶液,加盖后颠倒数次混匀,冰上放置15 min。10 000r/min离心5 min,上清液倒入另一离心管中。


(4)向上清液中加入等体积酚/氯仿,震荡混匀,10 000r/min 离心2 min,将上清液转移至新的离心管中。
(5)向上清液中加入等体积无水乙醇,混匀,室温放置2 min。离心5 min,倒去上清乙醇溶液,将离心管倒扣在吸水纸上,吸干液体。
(6)加1mL 70%乙醇,震荡并离心,倒去上清液,真空抽干,待用。
3.质粒DNA 的酶解
将自提质粒加入20μL 的 TE 缓冲液,使 DNA 完全溶解。取清洁、干燥、灭菌的具塞离心管编号用微量加样器按表1 所示将各种试剂分别加入每个小离心管内。
表1 DNA酶切加样表

* 补无菌双蒸水至20μL,依实际情况做相应调整
加样后,小心混匀,置于37℃水浴中,酶解2~3h,反应终止后,各酶切样品于冰箱中贮存备用。
4.DNA 琼脂糖凝胶电泳
(1)琼脂糖凝胶的制备:称取0.6g 琼脂糖,置于三角瓶中,加入50 mL TBE 缓冲液,经沸水浴加热全部融化后,取出摇匀,此为1.2%的琼脂糖凝胶。
(2)胶板的制备:取橡皮膏(宽约1cm)将有机玻璃板的边缘封好,水平放置,将样品槽板垂直立在玻璃板表面。将冷却至65℃左右的琼脂糖凝胶液,小心倒入凝胶液,使胶液缓慢展开,直到在整个玻璃板表面形成均匀的胶层,室温下静置30 min,待凝固完全后,轻轻拔出样品槽模板,在胶板上即形成相互隔开的样品槽。用滴管将样品槽内注满TBE缓冲液以防止干裂,制备好胶板后立即取下橡皮膏,将胶板放在电泳槽中使用。
(3)加样:用微量加样器将上述样品分别加入胶板的样品小槽内。每次加完一个样品,要用蒸馏水反复洗净微量加样器,以防止相互污染。
5. 电泳
加完样品后的凝胶板,立即通电。样品进胶前,应使电流控制在20mA,样品进胶后电压控制在60~80V,电流为40~50 mA。当指示前沿移动至距离胶板1~2cm 处,停止电泳。
6. 染色
将电泳后的胶板在EB 染色液中进行染色以观察在琼脂糖凝胶中的DNA 条带。
五、结果与观察
在波长为254nm 的紫外灯下,观察染色后的电泳胶板。DNA 存在处显示出红色的荧光条带。
六、思考题
1.染色体DNA 与质粒DNA 分离的主要依据是什么?
2.EB 染料有哪些特点?在使用时应注意些什么?
参考答案
1. 纯化DNA的方法主要依据染色体DNA比质粒DNA分子大得多,而且染色体DNA被断裂成线状分子,但质粒DNA 为共价闭环结构,当加热或用酸、碱处理DNA 溶液时,线状染色体DNA 容易发生变性,共价闭环的质粒DNA 在冷却和回到中性pH 时即恢复其天然构象。
2.EB 染料的全名是3,8-二氨基-5-乙基-6 苯基菲啶溴盐。EB 能插入DNA 分子中碱基对之间,导致EB 与DNA 结合,DNA 所吸收的260nm 的紫外光传递给EB,或者结合的EB 本身在300nm 和360nm 吸收的射线均在可见光谱的红橙区,以560 nm 波长发射出来。EB 染料有许多优点,如染色操作简便、快速,室温下染色15~20min;不会使核酸断裂;灵敏度高,10ng 或更少的DNA 即可检出。
但应特别注意的是,EB 是诱变剂,配制和使用EB 染色液时,应带乳胶手套或一次性手套,并且不要将该染色液洒在桌面或地面上,凡是沾污EB 的器皿或物品,必须经专门处理后,才能进行清洗或弃去。


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