生理学实验常用手术的基本操作

（一）术前准备
1．备皮
（1）剪毛法　　常用于急性实验。用一般弯剪刀帐号皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。
（2）拔毛法　　适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。
（3）剃毛法　　用于大动物的慢性实验。
（4）脱毛法　　用于无菌手术野备皮。
2．消毒　　常用于慢性实验，一般用碘伏（或强力碘等）或75%酒精常规消毒，但一般碘伏（或强力碘等）的效果较好。

（二）手术
1．切开皮肤　　先用左手拇指和食指绷紧皮肤，右手持手术刀切开皮肤，切口大小以便于手术操作为宜。
2．分离组织　　有钝性和锐性分离两种。钝性分离不易损伤神经和血管等，常用于分离肌肉包膜、脏器和深筋膜等；锐性分离要求准确、范围小，避开神经、血管或其他脏器。
（1）颈动脉分离术　　暴露气管，分别在颈部左右侧用止血钳拉开肌肉，于胸头肌与胸舌骨肌之间，可看到与气管平行的颈总动脉。它与迷走神经、交感神经、减压神经伴行于颈动脉鞘内（注意颈动脉有甲状腺动脉分支）。用玻璃分针小心分离颈动脉鞘，并分离出颈总动脉3cm左右，在其下面穿两条线，一线在近心端动脉干上打一虚结，供固定动脉套管用，另一线准备在头端结扎颈总动脉。
（2）迷走神经、交感神经、减压神经分离术　　按上法找到颈动脉鞘，先看清3条神经走行后用玻璃分针小心分开颈动脉鞘，切勿弄破动脉分支。辨认3条神经，迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细，且常与交感神经紧贴在一起（一般先分离减压神经）。每条神经分离出2～3cm，并各穿两条不同色的、生理盐水润湿的丝线以便区分。
（3）颈外静脉分离术　　颈部去毛，从颈部甲状软骨以下沿正中线做4～5cm皮肤切口，夹起一侧切口皮肤，右手指从颈后将皮肤向切口顶起，在胸锁乳突肌外缘，即可见到颈外静脉。用玻璃分　针分离出2～3cm，下穿双线备用。静脉压测定常采用颈外静脉。
（4）股动脉、股静脉分离术　　
①固定动物，在股三角区去毛，股三角上界为韧带，外侧为内收长肌，中部为缝匠肌。
②沿血管走行方向切一个长约4～5cm的切口。用止血钳钝性分离肌肉和深筋膜，暴露神经、动脉、静脉（神经在外，动脉居中，静脉在内）。
③分离静脉或动脉，在下方穿线备用。用温热生理盐水纱布覆盖于手术野。

（5）内脏大神经分离术
①家兔内脏大神经分离术：兔麻醉固定。沿腹部正中线做6～10cm切口，并逐层切开腹壁肌肉和腹膜。用温生理盐水纱布推腹腔脏器于一侧，暴露肾上腺，细心分离肾上腺周围脂肪组织。沿肾上腺斜外上方向，即可见一根乳白色神经，向下方通向肾上腺，并在通向肾上腺前形成两根分支，分支交叉处略膨大，此即为副肾神经节。分离清楚后，在神经下引线（不结扎）备用。
②狗内脏大神经分离术：同上法，暴露肾上腺。分离左侧内脏大神经时，向上方寻找半月交感神经节和内脏神经主干，用玻璃棒剥离盖在内脏大神经上的壁层腹膜，即可分离出内脏大神经。手术中要充分麻醉，防止反射性呼吸心跳停止。

（三）插管技术
1．气管插管术　　气管插管术是哺乳类动物急性实验中常用手术，可保证呼吸通畅；在开胸实验时，气管插管可接人工呼吸机；气管插管也利于乙醚麻醉；与呼吸换能器可压力换能器相连，可观察呼吸运动。
（1）仰卧位固定动物，颈前区备皮，从甲状软骨以下沿正中线切开并逐层钝性分离，暴露气管。
（2）分离并游离气管。在气管下方（食管上方）穿粗线备用。
（3）在甲状软骨以下0.5cm处横向切开气管前壁，再向头端作纵向切口，使切口呈“⊥”形。
（4）一手提线，另一手插气管套管，结扎固定。
2．动脉插管术
（1）用注射器向管道系统注满肝素生理盐水，排尽气泡，检查管道系统有无破裂，动脉套管尖端是否光滑，口径是否合适。
（2）尽可能靠头侧结扎颈总动脉。用动脉夹尽量靠近心脏侧夹闭颈总动脉。两者之间相距2～3cm，以备插管。
（3）用眼科镊子提起颈总动脉，用锐利的眼科剪刀，靠近结扎处朝心脏方向剪一“V”形切口，注意勿剪断颈总动脉。
（4）生理盐水润湿的动脉插管从切口向心脏方向插入颈总动脉，并保证套管与动脉平行以防刺破动脉壁。插入1～1.5cm左右，用线将套管与颈总动脉一起扎紧，以防脱落。
3．静脉插管术　　插管部位：兔在颈外静脉，猫、狗常在股静脉。在已好的静脉上，用线结扎远心端，在结扎处的近心侧的静脉上朝心脏方向剪一“V”形切口，将静脉套管向心脏方向插入静脉，结扎固定即可。
4．其他插管技术　　常因实验目的不同，需进行特殊插管术，如观察尿量需要膀胱插管或输尿管插管，观察某些药物对蛙心的影响时需要蛙心插管，做迷走神经和某些药物对胰液、胆汁分泌的影响时需在胰总管或胆总管插管等。其插管方法与上述基本相同。