一、实验目的 学习和掌握植物染色体显带技术和带型分析方法,进一步鉴别植物染色体组和染色体结构。 二、实验原理 对植物有丝分裂中期染色体进行酶解,酸、碱、盐等处理,再经染色后,染色体可清楚地显示出很多条深浅、宽窄不同的染色带。各染色体上染色带的数目、部位
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  • 染色体显带技术和带型分析

  • 点击:    作者:   来源:湖南农大 日期:2007-12-07    本站论坛
一、实验目的
学习和掌握植物染色体显带技术和带型分析方法,进一步鉴别植物染色体组和染色体结构。
二、实验原理
对植物有丝分裂中期染色体进行酶解,酸、碱、盐等处理,再经染色后,染色体可清楚地显示出很多条深浅、宽窄不同的染色带。各染色体上染色带的数目、部位、宽窄、深浅、相对稳定,为鉴别染色体的形态提供依据,也为细胞遗传学和染色体工程提供新的研究手段。
植物染色体显带技术包括荧光分带和Giemsa(吉姆萨)分带两大类。在植物染色体显带上最常用的是Giemsa分带技术,其中C带和N带较为常用。C带的形成认为是高度重复序列的DNA(异染色质)经酸碱变性和复性处理后,易于复性,而低重复序列和单一序列DNA(常染色质)不复性,经Giemsa染色后呈现深浅不同的染色反应。这种差异反映染色体结构的差异。
三、实验材料
洋葱、蚕豆、大麦、黄麻的根尖。
四、实验仪器及用具
多媒体系统(附显微演示),显微镜(附摄影装置),半异体致冷器,冰箱,恒温水浴锅,电子天平,液态氮装置,容量瓶,试剂瓶烧杯,染色缸,载玻片,盖玻片,剪刀,镊子,玻璃板,滤纸,标签,铅笔
五、药品和试剂
冰醋酸,无水酒精,甲醇,盐酸,柠檬酸钠,氢氧化钡,氯化钠,磷酸二氢钠,磷酸二氢钾,磷酸氢二钠,甘油,Giemsa粉剂,果胶酶,纤维素酶
试剂1:Giemsa液:0。5克Giemsa,33ml甘油,33ml甲醇,用少量甘油将Giemsa粉末研磨至无颗粒,剩余甘油分次洗涤至棕色瓶内,置56℃恒温2h,加入甲醇,过滤后保存于棕色瓶中。
试剂2 :5%氢氧化钡:5gBa(OH)2加入100ml沸蒸馏水中溶解后过滤,冷却至18-28℃。
试剂3:2×SSC溶液:0。3M氯化钠+0。3M柠檬酸钠。
试剂4:1M NaH2PO4溶液。
试剂5:1%纤维素酶和果胶酶混合液。
试剂6:1/15磷酸二氢钾和1/15磷酸氢二钠缓冲液。
六、实验步骤
(一)染色体分带
1.材料准备  待洋葱鳞茎发根长2cm左右,切取根尖进行预处理。蚕豆种子浸种发芽,待幼根长至3cm左右,切取根尖进行预处理。蚕豆主根根尖切去后继续长出的次生根,可再切取次生根根尖进行预处理。大麦种子发芽至幼根长1cm左右,切取白色的幼根进行预处理。
2.预处理  洋葱和蚕豆根尖在0。05%秋水仙碱溶液中预处理2~3h。处理温度一般为25℃。预处理后须用清水冲洗多次,洗去药液。
3.固定  以上各材料经预处理后,放入卡诺氏固定液中固定0。5~24h,转换到70%酒精,置于冰箱中保存备用。
4.解离  洋葱、蚕豆根尖在0。1N盐酸溶液中置于60℃恒温下处理10~15min。大麦根尖在37℃下用1%果胶酶处理30min,然后在0。1N盐酸溶液中置于60℃下处理5min。
上述材料用酸处理后,须用蒸馏水冲洗多次,除去残留酸液,否则将会影响染色体的显带效果。
5.压片  与常规的植物染色体压片方法相同。在45%醋酸中压片,制成白片。在相差显微镜下检查染色体分散程度,挑选出分裂相多,染色体分散均匀的片子。选出的玻片经液氮、CO2干冰或半导体致冷器冻结,用刀片揭开盖玻片。置室温下干燥。
6.空气干燥  脱水后的染色体标本一般需经过4~7天的空气干燥,再进行分带处理。不同的材料所需干燥的时间不一样。洋葱要求空气干燥的时间较严,未经空气干燥的染色体不显带,干燥一周后经显带处理显示末端带,干燥半个月后能同时显示末端带和着丝点带。而蚕豆、黑麦、大麦则要求干燥时间不十分严格。(www.51protocol.com)
7.显带处理  空气干燥后的染色体标本即可进行显带处理。处理方法不同,可显示不同的带型。
(1)C带  HSG法(Hydrochloric acid~Saline~Giemsa method)将空气干燥后的洋葱、蚕豆染色体标本浸入0。2N盐酸(25℃左右)分别处理30和60min。用蒸馏水冲洗多次后,在60℃的2×SSC溶液中保温30min,再用蒸馏水冲洗数次,室温风干,即可染色。
BSG法(Barium~Saline~Giesa method)  将空气干燥后的黑麦、大麦的染色体标本浸入盛有新配制的5%氢氧化钡饱和液的染色缸中,在室温条件下处理5~10min,然后用蒸馏水小心地多次冲洗浮垢后,在60℃的2×SSC溶液中保温60min,再用蒸馏水冲洗数次,室温风干,即可染色。
(2)N带  将黑麦、大麦种子发根1cm左右切取,在0℃冰水中预处理24h。卡诺氏固定液中固定半小时以上,1%醋酸洋红染色液中染色2h,然后在45%醋酸中压片,冰冻法揭开。尔后在45%醋酸60℃条件下脱色10min,再在95%酒精室温下脱水10min,气干过夜。最后在1M NaH2PO4溶液中95℃恒温下保温2min,蒸馏水冲洗,气干后即可染色。
8. 吉姆萨染色  吉姆萨母液用1/15M磷酸缓冲液按一定的比例稀释。例如,10份磷酸缓冲液加1份吉姆萨母液稀释即为10:1,一般都采用扣染法染色。在一干净的玻璃板上,对称放置两根牙签或火柴棒,距离与载玻片上的材料范围相等。将带有材料的玻片翻转向下,放在牙签上,然后沿载玻片一边向载玻片与玻璃板之间的空隙内缓缓滴入染色液,在室温下染色。染色时间因材料而异,因吉姆萨染料批号不同、质量上有差异,因此其染色液浓度和染色时间需作适当调整。下列材料的染色浓度和染色时间可供参考。
 
蚕豆
pH7。2
10:1
30min
洋葱
pH7。2
10:1
15min
大麦
pH6。8
10:1
30min
黑麦
pH6。8
20:1
30min
9.镜检和封片  染色后的玻片标本,用蒸馏水洗去多余染料,染色过深可用磷酸缓冲液脱色。室温下风干后即可镜检,挑选染色体带型清晰的片子,用树胶封片。
(二)染色体带型分析  经过上述处理的植物染色体标本,可以显示出C带或N带的带型,一般有以下四种带型:
1.着丝粒带(C带)  带纹分布在着丝粒及其附近,大多数植物的染色体可显示C带。蚕豆、黑麦、大麦等的染色体着丝粒带比较清楚,洋葱染色体的着丝粒带较浅。
2.中间带(I带)  带纹分布在着丝粒至末端之间,表现比较复杂,不是所有染色体都具有中间带。
3.末端带(T带)  带纹分布在染色体末端。洋葱和黑麦染色体具有典型的末端带,而蚕豆、大麦的末端带不明显。
4.核仁缢痕带(N带)  带纹分布在核仁组织者中心区。蚕豆的大M染色体和黑麦的第Ⅶ染色体具有这种带型。
同时具有以上四种带型的叫完全带,以“CITN”表示,其它称为不完全带,有“CIN”和“以CTN”型、“TN”型和“N”型。
根据植物各染色体上显示的不同带纹和带纹的宽窄,可按染色体组型分析的方法对同源染色体进行剪贴排列,绘出模式图,从而对各染色体的带型作出分析。
七、实验作业
1.将提供的植物染色体C带带型进行同源染色体排列剪贴,
2.绘制带型模式图并作出带型特点分析描述。

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